应对非洲猪瘟，猪场日常管理生物安全细节（三）

在非洲猪瘟的防控过程中，准确、快速、及时地诊断对尽早发现疫情，及时处理极其重要。为确保能够从实验室检测中获得准确的诊断结果，在临床取样时应重点考虑动物发病的时间、治疗史、发病状态来选择最佳时机和最具代表性的动物进行采样。其次，有效的样本采集后，如何使用正确的运输方式提交到实验室进行检测也会影响诊断结果的准确性。临床兽医对诊断结果最大的贡献就是以最可靠的采集和运输方式向诊断实验室提供最合适的临床样本。同时，实验室选择正确有效的检测方法对送检样品进行规范准确的检测是非洲猪瘟疫情确诊和阳性动物筛查的重中之重。

一、样品的采集、运送与储存

我国要求对非洲猪瘟的诊断、报告与防控必须严格遵照《中华人民共和国动物防疫法》《突发重大动物疫情应急预案》《非洲猪瘟防治技术规范》《非洲猪瘟防控应急预案》的要求执行。疑似样品的采集、运送与保存必须符合《病原微生物实验室生物安全管理条例》的规定，样品的采集，运送和存储单位必须具备相应资格。

样品的采集、运送与存储关乎诊断结果的可靠性、准确性。实验室检验能否得出准确结果，与病料取材是否得当、保存是否得法和送检是否及时等有密切关系。当有关单位或者个人怀疑发生非洲猪瘟疫情时，应及时向当地动物疫病预防控制机构报告。

病猪和病死猪的全血、组织、分泌物和排泄物中均可能含有病毒。内脏器官弥漫性出血症状明显，故在采集组织病料时需首先通过剖检观察器官组织的病理变化，结合生前各项临床症状进行初步诊断，采集的脏器应尽可能全面，如疫点周边有野猪分布，应联合林业部门同时采集野猪样品。

二、样品的采集

1. 全血和血清

采样前提前准备好采血所需器材，如注射器、真空采血针和管、1.5mL 离心管、记号笔、样品袋、泡沫箱、冰袋、白纸和笔。抗凝血采集，从耳静脉或前腔静脉采集血液。

用注射器吸取 EDTA 抗凝剂（不可用肝素抗凝，易抑制后续 PCR 反应），静脉采集血液5mL，颠倒混匀后，注入无菌容器。如条件允许，最好每份血液样品采集 2 管，以便留存充足的备份样品。也可以用已经含有抗凝剂的真空采血器抽取血液。血清分离，对非洲猪瘟进行血清学样品采集时，需对病猪，健康猪以及处于不同发病阶段的猪分别采集血清。注射器（或真空采血针和管）采集全血 3~5mL，室温放置 12~24h，收集自然析出血清或离心分离血清，置于无菌容器中，封口，标识后放入加入冰袋的泡沫箱送检。

2. 口腔 / 鼻 / 血液拭子

采样前提前准备好无菌棉签、离心管、生理盐水、手套、记号笔。离心管内加生理盐水或者 PBS 适量，以没过棉签头为宜。

口腔拭子采集，将无菌棉拭子插入猪口腔中，5~10cm 深，转动棉拭子顺时针和逆时针擦拭口腔数次，拿出棉拭子放到加有 2~3mL 生理盐水的离心管中，挤压几次，并折断木棒，盖上离心管管盖。

鼻拭子采集，将无菌棉拭子斜 45°角插入猪鼻腔中线附近，5~10cm 深，把鼻拭子贴着猪鼻腔周壁顺时针擦两到三圈，然后逆时针擦拭，然后换一个鼻孔重复这套动作，保证拭子看起来湿润。

拿出棉拭子放到加有 2~3mL 生理盐水的试管中，挤压几次，并折断木棒，盖上离心管管盖。

血拭子采集，用一次性注射器在猪只耳朵处扎一下，用无菌棉拭子反复擦拭流出来的血液，将棉拭子放到加有 2~3mL生理盐水的试管中，挤压几次，并折断木棒，盖上离心管管盖。

应该注意，采样前，务必保证采样管、无菌棉拭子、自封袋等物品处于干净清洁、未被污染的状态。采集的每头猪的口腔液、鼻拭子、血液拭子，要分开装入采样管内；装有猪口腔液、鼻拭子、肛门拭子、全血的采样管，要分开装入自封袋内；自封袋密封严实后，标注相应信息，置于加冰袋的无菌容器内，标明动物编号。

3. 口腔液样本

根据猪群日龄不同，选不同直径全棉绳进行采集，保育猪可用直径 1.3cm 绳索，而生长育肥猪和生产公母猪口则选用直径 1.6cm 的绳索进行口腔腔液采集，悬挂处应远离饲槽和猪排便区。棉绳上端固定，下垂高度与猪只的肩关节齐平，任猪咀嚼，30min 后收取棉绳，刮取和挤压口腔液至自封袋，然后装入 EP 管或其他容器。一般认为≥ 1mL 为有效采集量。采集完毕应立即取走绳索，避免猪群失去对绳索兴趣，不利于下次采集。

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