禽病实验室药敏检测流程与方法

2.微量稀释法（MIC测定）

步骤：

1.配制系列浓度抗菌药物（如倍比稀释法）；

2.接种菌悬液至96孔板；

3.培养后观察最低抑制细菌生长的药物浓度（MIC）。

适用性：精准定量，适用于科研或复杂病例。

3.E-test法

使用梯度浓度药敏试条，直接读取MIC值，准确性高，但成本较高。

三、注意事项与质量控制

1.质量控制菌株

使用标准菌株（如大肠杆菌ATCC 25922、金黄色葡萄球菌ATCC 29213）验证药敏试验可靠性。

2.特殊病原处理

支原体：需专用培养基（如SP4）和CO₂培养箱。

厌氧菌：需厌氧环境培养。

3.避免污染：严格无菌操作，防止交叉污染。

4.临床结合：药敏结果需结合感染部位、药物药代动力学综合判断。

四、常见问题与解决

假耐药/假敏感：菌液浓度不准或培养基不合格，需校准浊度计和培养基pH。

抑菌圈模糊：可能因细菌产生生物膜或混合感染，需重新纯化菌种。

支原体药敏困难：延长培养时间至72小时，使用特异性药敏板。

通过规范化的药敏检测，可有效减少抗菌药物滥用，延缓耐药性产生，提高禽病治疗效果。实际应用中需结合实验室条件选择合适方法，并严格遵循标准化操作流程。

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