羊支原体性肺炎的防治（二）

4  病理变化

剖检可见如下病理变化：两侧的肺呈紫红色，充血水肿，并有针尖状出血点；胸腔常有淡黄色液体，有时多至500～2000 mL，暴露于空气后其中有纤维蛋白凝块。胸膜变厚而粗糙，胸膜和肺表面有网状或条状的黄白色纤维素凝块；心包积液、粘连，心肌松弛、变软；急性病例的损害多为一侧，间或两侧有纤维素性肺炎，还可见肝、肾、脾、胆囊肿胀。

病程延长者肺肝变区机化，结缔组织增生，甚至有包囊化的坏死灶，淋巴结萎缩、变硬。

5  病原学诊断

5.1  病料采集与保存

无菌采集肺脏、胸腔渗出液、肺门淋巴结、心血等病料。肺脏剪成3～5 cm方块，肺门淋巴结以整个淋巴结为好。肺和淋巴结保存在灭菌的50%甘油缓冲溶液中，胸腔渗出液不加任何保存液。病料加冰袋或冰盒包装，尽快送样检测。

5.2  显微镜检查

将病料直接涂片，革兰氏、姬姆萨或美蓝法染色，油镜下暗视野观察，羊传染性胸膜肺炎病原为细小的多型性菌体，呈球状、杆状、丝状等，革兰氏染色阴性。

5.3  病原分离培养

选用改良的Hayflick液体与固体培养基，接种胸腔渗出液或病料乳化液，于37℃培养，隔48-72h盲传2-3代，液体培养基可见颜色变黄，另外丝状支原体山羊亚种与山羊支原体山羊亚种可致液体培养基浑浊，绵羊肺炎支原体和山羊支原体山羊肺炎亚种基本不浑浊或轻微浑浊。固体培养基可见白色较大（Mmc和Mcc）或针尖大小菌落（Mccp和Movi）。取培养基上的典型菌落涂片，革兰氏、姬姆萨、或美蓝法染色镜检。也可选用其他适宜羊传染性胸膜肺炎病原生长的培养基进行分离培养。

5.4  动物回归试验

取分离培养的羊传染性胸膜肺炎病原体，分别注射到健康羊、家兔气管内，羊多在接种后1～7 d发病，表现与自然病例相同的症状和病理变化，而人工感染兔不发病。

5.5  血清学检测

可通过 微量间接血凝试验、生长抑制试验、免疫荧光抗体试验 与代谢抑制试验等进行诊断。

5.6  聚合酶链式反应（PCR方法）

可采集棉拭子或发病羊脾肺肾淋巴结等组织，用特异性PCR引物进行扩增，最终可区分引起羊传染性胸膜肺炎的病原体。

6  预防

6.1  加强羊群饲养

加强饲养管理，增强羊群的抵抗力。饲料要求按照NY 5150的规定执行；饮水要求按照NY 5027的规定执行；饲养管理按照NY/T 5151的规定执行；环境控制应符合NY/T 388的规定。

6.2  严格羊群检疫

建立基础母羊群，自繁自养。品种调整或补充种源，应加强检疫。

6.3  隔离、封锁和消毒

发现疫情及时上报，对发病羊群按NY 5149的规定进行隔离、封锁，并做好消毒工作。消毒剂的使用应符合NY 5148的规定。对病死、剖检羊尸体进行无害化处理。

6.4  免疫接种

根据病原体流行情况选用适当的疫苗，按NY 5149的规定进行免疫接种。我国用于预防本病的疫苗有：山羊传染性胸膜肺炎灭活疫苗、山羊传染性胸膜肺炎灭活疫苗（山羊支原体山羊肺炎亚种M1601株）、羊支原体肺炎灭活疫苗和山羊支原体肺炎灭活疫苗。

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