1.2.2 核酸提取液制备 消毒剂与不同浓度ASFV作用产物制备:取ASFV 阳性组织样品研磨离心后取上清,用磷酸缓冲盐溶液制成10、100、1000 倍病毒稀释液,参照1.2.1 方法制备消毒剂与病毒液混合液,室温条件下(20~25℃)作用30min。 消毒剂与ASFV 不同作用时间作用产物制备:按照1.2.1方法制备得到的消毒剂与病毒液混合液,室温条件下(20~25℃)分 别作 用5、10、20、30 和40min。 消毒剂与ASFV 不同作用温度产物制备:按照1.2.1 方法制备得到的消毒剂与病毒液混合 液,分别于4℃、25℃和35℃温度条件下作用30min。 阴、阳性对照样品均按照相同条件作用处理。 1.2.3 病毒核酸提取 取200μL 上述作用后产物,按照DNA/RNA 提取试剂盒说明进行操作,提取后的核酸保存于-80℃冰箱备用。 1.2.4 数字PCR 扩增 数字PCR 反应体系:2×SuperMix 10μL,上游引 物(10μmol/L)、下游引 物(10μmol/L)各1.8μL,探 针(10μmol)0.05μL,DNA 模板2μL,用ddH2O 补齐至20μL。普 通PCR 反应条 件:95℃10min;94℃30s,60℃1min,40 个循环;4℃60min,升降温速率2℃/s。 1.2.5 检测结果分析 重复处理各组样品3 次并检测,统计平均检测值,将各组检测结果分别与对应阳性对照组比较。 2、结果 2.1 各消毒剂与不同浓度ASFV 作用结果 各消毒剂在选定稀释度下与不同浓度的ASFV 在室温条件下作用30min 后,采用微滴式数字PCR 进行检测。处理样品平行检测3 次,各组平均阳性微滴数批间变异系数为0.42%~5.91%;取同一批次样品平行提取核酸3 次进行检测,各组平均阳性微滴数批内变异系数为0.15%~2.19%。 结果显示,与阳性对照相比,本研究中不同浓度的AS-FV 与二氯异氰尿酸钠作用后核酸降解量最大,病毒核酸含量由17489.2 降为10.1,当病毒核酸含量为1743.2 时,与该消毒剂作用后检测不到病毒核酸;10 倍稀释的病毒液分别与戊二醛和过硫酸氢钾消毒剂作用后,检测的病毒核酸含量降低约100 倍,当病毒进行100 倍稀释后,这两组均未检测到病毒核酸;10 倍稀释的病毒液分别与过氧乙酸和聚维酮碘作用后,检测病毒核酸降低约0.4 倍;病毒与其他种类消毒液作用后,病毒核酸降解量相对不明显(表2)。 表2 组织样品微滴式数字PCR 检测结果
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